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  • Title: The Contribution of Eimeria Coinfection and Intestinal Inflammation to Cecal Colonization and Systemic Spread of Salmonella Typhimurium Deficient in Tetrathionate Reductase or Type III Secretion Systems Salmonella Pathogenicity Island 1 or 2.
    Author: Rimet CS, Maurer JJ, Berghaus RD, Jordan BJ, da Silva LHA, Stabler LJ, Johnson KK, Tensa LR, Segovia KM, França MS.
    Journal: Avian Dis; 2019 Dec; 63(4):559-567. PubMed ID: 31865669.
    Abstract:
    Intestinal inflammation may provide a growth advantage for Salmonella and enhance its systemic spread in chickens. Salmonella triggers intestinal inflammation in the host by using type III secretion systems (T3SS) and produces the inflammatory end product tetrathionate. In mice, tetrathionate respiration confers a growth advantage for Salmonella Typhimurium over the competitive microbiome in the inflamed intestine. Coccidia also promote intestinal inflammation and enhance Salmonella intestinal growth and systemic spread in chickens. The objective of this study was to evaluate the contribution of inflammation, induced by Eimeria spp. or Salmonella Typhimurium, to Salmonella colonization and dissemination in chickens. In addition, the fitness costs associated with defects in tetrathionate reductase and T3SS associated with Salmonella Pathogenicity Island 1 or 2 (SPI-1 or SPI-2) were evaluated in in vivo competition experiments with wild-type Salmonella strain, with or without Eimeria coinfection. One-day-old specific-pathogen-free chickens were orally inoculated with a sham inoculum or with 4 × 102Eimeria oocysts cocktail of Eimeria tenella, Eimeria acervulina, Eimeria maxima, and Eimeria mitis. At 6 days of age, birds were orally administered a 1:1 ratio of Salmonella Typhimurium wild-type and mutant deficient in tetrathionate reductase, SPI-1, or SPI-2 (108 colony forming units/bird). Ceca, livers, and drumsticks were collected at 3, 7, 14, and 42 days after Salmonella infection, for bacteriology. Intestinal inflammation was scored by histology. Significantly higher intestinal inflammation was observed in challenge groups compared with the control. However, there were no significant differences in intestinal inflammation scores between groups coinfected with both Eimeria spp. and Salmonella Typhimurium and birds infected with Salmonella alone, and Eimeria coinfection did not increase Salmonella prevalence or abundance. Contrary to mouse studies, tetrathionate reductase did not enhance Salmonella Typhimurium cecal colonization or systemic spread in chickens. SPI-1 and SPI-2 played a significant role in Salmonella dissemination and cecal colonization in chickens, respectively. Contribución de la coinfección por Eimeria y de la inflamación intestinal a la colonización cecal y a la propagación sistémica de Salmonella Typhimurium deficiente en tetrationato reductasa o de sistemas de secreción de tipo III de islas de patogenicidad 1 o 2 de Salmonella. La inflamación intestinal puede proporcionar una ventaja para el crecimiento de Salmonella y aumentar su propagación sistémica en pollos. Salmonella desencadena la inflamación intestinal en el huésped mediante el uso de sistemas de secreción tipo III (T3SS) y produce el producto final inflamatorio, tetrationato. En ratones, la respiración con tetrationato confiere una ventaja de crecimiento para Salmonella Typhimurium sobre el microbioma competitivo en el intestino inflamado. Coccidia también promueve la inflamación intestinal y mejora el crecimiento intestinal de Salmonella y la propagación sistémica en pollos. El objetivo de este estudio fue evaluar la contribución de la inflamación, inducida por Eimeria spp. o Salmonella Typhimurium, en la colonización y diseminación de Salmonella en pollos. Además, se evaluaron los costos de aptitud asociados con defectos en la tetrationato reductasa y T3SS asociados con las islas de patogenicidad 1 o 2 de Salmonella (SPI-1 o SPI-2) mediante experimentos de competencia in vivo con cepas de Salmonella de tipo silvestre, con o sin coinfección con Eimeria. Pollos libres de patógenos específicos de un día de edad se inocularon por vía oral con un inóculo falso o con 4 × 102 de un coctel de ooquistes de Eimeria que incluyó Eimeria tenella, Eimeria acervulina, Eimeria maxima y Eimeria mitis. A los seis días de edad, se les administró a las aves administró por vía oral una proporción 1: 1 de Salmonella Typhimurium de tipo silvestre o tipo mutante que es deficiente de tetrationato reductasa, SPI-1 o SPI-2 (108 unidades formadoras de colonias/ave). Se recolectaron ciegos, hígados y pernas a los tres, siete, catorce y 42 días después de la infección por Salmonella, para bacteriología. La inflamación intestinal se calificó por histología. Se observó inflamación intestinal significativamente mayor en los grupos de desafío en comparación con el control. Sin embargo, no hubo diferencias significativas en las puntuaciones de inflamación intestinal entre los grupos coinfectados con Eimeria spp. y Salmonella Typhimurium y las aves infectadas con Salmonella por si sola y la coinfección con Eimeria no aumentó la prevalencia o abundancia de Salmonella. A diferencia de los estudios en ratones, la tetrationato reductasa no mejoró la colonización cecal de Salmonella Typhimurium o la diseminación sistémica en pollos. Las islas de patogenicidad SPI-1 y SPI-2 jugaron un papel importante en la diseminación de Salmonella y en la colonización cecal en pollos, respectivamente.
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